脑定位仪夹持器(电夹持器,套管夹持器)主要用于微量注射器给药实验,可以同时固定注射器针筒和针头,注射器的夹持更稳定;
多种款式可选,请根据实际需求选择合适的型号: K-5 电夹持器,适合夹持0.3-1.5mm的电、探针、导管; K-5-2 C型电夹持器,在K-5型号基础上的改良的C字半包围卡扣,适合夹持0.3-2mm的电、探针、导管; K-6 二合一夹持器适合夹持3mm-12mm的微量进样器; K-7 三合一夹持器带电夹持和注射器两个模块,能夹持微量进样器和进样器针头,头端可夹持0.3-1.5mm的电或针头; K-8 套管夹持器,可以夹持范围2.1mm-5.0mm的电或套管; K-9 楔形电夹持器,可以夹持0.9mm-3mm的电或套管; K-10 套管夹持器,适合夹持3.5mm的脑注射套管; K-11 置放大器夹持器,适合夹持0.1-7mm的脑电记录系统的置放大器、头套等装置; K-15 光纤夹持器,适合夹持1-1.5mm的电、光纤、导管、探针; K-16 陶瓷针夹持器,适合夹持1.25mm和2.5mm两种规格的电、光纤、导管、探针:采用锁嘴式螺母旋转锁紧,可有效防止螺丝直顶带来对陶瓷针的损坏;


根据实验需求,还有脑立体定位仪的其他配件可供选择:

脑立体定位仪 通过加装不同的 适配器,可以扩展定位仪的功能,适应更多的动物种类(多种款式的脑立体定位仪适配器可供选择,敬请来电咨询) 小鼠及幼大鼠脑立体定位仪适配器
该小鼠适配器耳杆采用树脂材料,对尖端进行适合的锥度处理,能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤,两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节,并带有刻度,适合不同的角度进行实验。 型号:YAN-5030

型号:YAN-5029 
大鼠定位仪适配器 
大鼠、小鼠通用型适配器 
小鼠耳棒
 保温型 小鼠脑定位仪适配器 增加一台水浴保温主机,可实现对术中的小鼠进行体温维持。
 60° 小鼠耳杆

大鼠适配器 · 大鼠适配器是脑立体定位仪的标准配置,通过一对耳杆、鼻和门齿夹固定大鼠头部 · 可以通过燕尾槽上下移动 30mm · 并具有100um的精度,水平方向可以达到50mm的移动距离,满足不同体重大鼠的固定 · 大鼠适配器默认配置为18度耳杆和门齿夹,可以选配45度耳杆

脑立体定位仪麻醉适配器,用于安装在动物脑立体定位仪上,用以进行异氟烷气体麻醉操作的部件。麻醉适配器具体安装在大鼠或小鼠适配器的U型杆上,通过锥形孔将动物的头部固定,气体入口、出口和动物给气口是呼吸联通的,废气出口可连接负压型废气清除器,能够有效减少麻醉气体泄露对研究人员产生影响。 麻醉面罩有大鼠和小鼠两种规格,可配合立体定位仪使用,也可作为一般的动物吸入式麻醉手术使用; 配合脑立体定位仪使用的大小鼠麻醉平台及大小鼠呼吸面罩:
 订货信息 | 规格 | 产品名称 | | 51609M | 定位仪用麻醉面罩-小鼠 | | 51610 | 定位仪用麻醉面罩-大鼠 |
可根据需要选择小鼠脑立体定位仪、大鼠脑立体定位仪:
玉研仪器自主研发脑立体定位仪十四年,适用于大鼠、小鼠等实验动物,经典十字操作臂实现准确定位,精度可达10微米,特制螺纹精密螺杆,稳固不晃动实现对特定脑区的精确定位,是神经环路研究、神经系统性疾病、神经药理等领域内的重要研究设备,广泛面向全国各大科研院校,医院,企业,药企,医疗机构等科研单位。大鼠脑立体定位仪、小鼠脑立体定位仪(双臂脑立体定位仪,单臂脑立体定位仪,数显型脑立体定位仪)(根据需求不同,有多种不同的型号可供选择:单臂型,双臂型,数显型,数控型,敬请来电咨询)
轻便型: 
标准型: 
动物脑立体定位仪产品特点: 操作灵活、简便,标配大鼠适配器; 脑立体定位仪标尺是由激光雕刻,清晰易读:手动款式精确度为0.1mm,数字显示型号精度为0.01mm; 脑立体定位仪操作臂移动范围(上下,左右,前后):三方向移动距离80mm; 垂直方向可90度转动,并随时锁定位置; 扩充能力很强,可增加操作臂,增加注射装置及颅钻等; 可以根据需要增加不同的固定器,用于多种动物;
脑立体定位仪具有以下优势: 标尺易读数 移动平滑 电生理操作方便 配件多样,可选配各种动物适配器,麻醉罩以及颅钻
大鼠脑立体定位仪的主要构造:
 数字显示型脑立体定位仪Digital Stereotaxic Instrument 是一种可靠的多功能的设备,通过仪器的准确定位,可以确保点击、微管以及其它设备在实验过程中的精确定位。
数显型脑立体定位仪主要特点:
1.适用于小鼠、新生大鼠、鸟类等动物的研究(请根据需求选择合适的配置); 2.无U型底座设计,操作空间化; 3.读数精度采用游标卡尺方式,读数精度为10μm; 4.操作臂上下、前后、左右移动范围可达80mm;垂直方向移动90°可锁住; 5.配有鼻子适配器、三种不同型号的耳棒等; 6.三角形的导轨使之能够进行快速定位。其通用的接点便于实验者横向或纵向移动电极,锁定装置能够将电极以任何角度固定,不会滑脱。 7.扩充能力很强,可增加操作臂、增加注射装置及颅钻等,也可以根据需要增加不同的固定器; 8.目标定位的调零功能:在任意一个位点,每条轴方向上的显示都可以归零,这样就可以使操作简化,阅读方便。实际操作中,如果要定位一个特殊位点,可以先找到参考点,然后归零,再移动数显型脑立体定位仪操作臂到希望到达的点上,调低电极,夹持器或微管到位点上即可。 小鼠及幼大鼠脑立体定位仪适配器 该小鼠适配器耳杆采用树脂材料,对尖端进行适合的锥度处理,能够牢固的夹紧小鼠头部又避免了采用不锈钢作为耳杆对小鼠颅骨的损伤,两侧耳杆的高度和门齿夹的高度均可自由进行调节,并带有刻度,适合不同的角度进行实验。
 多种型号可供选择:
标准脑立体定位仪(小鼠) 双臂标准脑立体定位仪(小鼠) 数显标准脑立体定位仪(小鼠) 数显双臂标准脑立体定位仪(小鼠) 标准脑立体定位仪(大鼠) 双臂标准脑立体定位仪(大鼠) 数显标准脑立体定位仪(大鼠) 数显双臂标准脑立体定位仪(大鼠) 电动标准脑立体定位仪(大鼠) 定位仪基座 大鼠头部固定器 小鼠头部固定器 SA-100系列 标准型大鼠脑立体定位仪:

SA-100系列 标准型小鼠脑立体定位仪: 
SA-150系列 数显型脑立体定位仪(大鼠) 
单臂、数显标准脑立体定位仪(小鼠) 
双臂、数显双臂标准脑立体定位仪(大鼠、小鼠)

脑立体定位仪相关配件及可选配件:


根据需要,还可以选择头部固定器: 大鼠脑部固定器适用于脑部固定的操作实验, 同时配合气体麻醉使用。非常适用于显微镜下对大鼠(小鼠有对应的型号)的手术操作和观察实验使用。我们还可以提供核磁共振兼容型号,供核磁环境中使用。 标准型大鼠头部固定器:

小鼠脑室显微观察固定器 型号:Y-AM-200 
还可以加配跑轮,在小鼠运行状态下配合双光子显微镜对脑室进行成像和观察: 型号:Y-AM-210 

小动物脑立体定位仪部分参考文献: 1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841. 2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106. 3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962. 4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology. 5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology. 6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology. 7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161. 8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914. 9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894. 10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480. 11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191. 12. Hru?ka-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9. 13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10. 14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9. 15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9. 敬请关注玉研仪器微信号:yuyanbio

更新时间:2026/2/12 9:47:13
标签:小动物定位仪电夹持器 电固定器 动物定位仪电夹持器 大鼠定位仪电夹持器 小鼠定位仪电夹持器 大鼠夹持器 小鼠夹持器
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